血管平滑筋細胞内カルシウムの画像解析による吸入麻酔薬の作用機序の解明

通过血管平滑肌细胞内钙的图像分析阐明吸入麻醉剂的作用机制

• 批准号: 06671509
• 负责人: 富士原 秀善
• 金额: $ 1.22万
• 依托单位: Niigata University
• 依托单位国家: 日本
• 项目类别: Grant-in-Aid for General Scientific Research (C)
• 财政年份: 1994
• 资助国家: 日本
• 起止时间: 1994 至 无数据
• 项目状态: 已结题
• 来源: https://kaken.nii.ac.jp/en/grant/KAKENHI-PROJECT-06671509/
• 关键词: カルシウムイオン; fura-2; 微量注入; 画像解析; 血管平滑筋

平成6年度は、細胞内にイノシトール三燐酸、ヘパリンを微量注入するための基礎的な実験を行った。ラット(6-8週令)胸部大動脈由来培養血管平滑筋細胞に蛍光カルシウム指示薬fura-2を負荷後、対物20倍レンズで観察した。既存のARUGUS200CA細胞内カルシウムイオン濃度測定装置により、340nm及び380nmの紫外線を交互照射し、各々500nmおける蛍光強度を測定した。既存のマイクロマニピュレータ5170(カ-ルツァイス社製)を用いて観察対象とする細胞近傍へ、あらかじめ細胞内組成液を充填した微小ピペットを近付けた。その後、マイクロインジェクタ5242(エッペンドルフ社製)により微量注入を行い、蛍光画像を取得した。微量注入操作のみによる細胞内カルシウムイオン濃度分布への影響を検索するために細胞外液のカルシウムイオン濃度、微小ピペット内の細胞内組成液のカルシウムイオン濃度、及びカルシウムキレーターの濃度、蛍光カルシウム指示薬fura-2の濃度、注入圧、注入時間等を変化させて実験を行った。その結果、1)微小ピペットによる細胞膜刺激のみで細胞内カルシウムイオン濃度上昇が観察された。2)細胞外液のカルシウムイオン濃度をカルシウムキレーターにより0mMとし、さらに微小ピペット内溶液にカルシウムキレーターを添加しfura-2を0.1mM加え、注入圧30-50hctPa、注入時間0.1-0.5秒の範囲で微量注入を試みたところ、細胞内蛍光強度の減少が見られた。3)そこで上記の条件でfura-2を10mM加え、色素注入を行い、fura-2の蛍光強度を360nmの紫外線を照射し観察したところ、注入時にfura-2は細胞全体に広がるが、その後蛍光強度は急峻に減少し、注入操作後、細胞の反応性を確認するために血管伸縮薬を投与した時の画像取得に耐えないことがわかった。以上より、細胞膜に非可逆的損傷を与えないためにより正確、精密な熟練した注入操作が必要であること、またカルシウムイオン濃度の急速な変化をとらえるためにカルシウムイオン濃度測定装置のコンピュータメモリを増設するなど時間解像度を改善すべきこと、より高倍率の対物位相差、及び対物蛍光レンズが必要であることがわかった。今後、これらの諸問題を解決すべく研究をすすめる予定である。

In 2006, the cellular triphosphate and micro-injection were carried out. After 6-8 weeks of culture of vascular smooth muscle cells in thoracic arteries, the cells were examined by light microscope after loading with fura-2 and 20-fold. An apparatus for measuring the intracellular concentration of existing ARUGUS 200CA cells was used to measure the intensity of ultraviolet rays at 500nm and 340 nm respectively. The existing cells are filled with micro-cells. After the injection, the microinjection was performed and the photo was obtained. The influence of microinjection on the distribution of intracellular concentration of the cell was investigated by varying the concentration of extracellular fluid, the concentration of intracellular component fluid in microinjection, the concentration of intracellular component fluid, the concentration of fluorescent indicator fura-2, injection pressure, injection time, etc. The results are as follows: 1) Microscopic cell membrane stimulation and intracellular cell membrane concentration increase were observed. 2)The concentration of extracellular solution was changed from 0mM to 0.1 mM, and the concentration of intracellular solution was changed from 0 mM to 0.1 mM. The injection pressure was 30-50hctPa. The injection time was 0.1-0.5 seconds. The decrease of intracellular fluorescence intensity was observed. 3) Under the conditions listed above, fura-2 was added at 10mM, pigment was injected, ultraviolet light intensity of fura-2 was irradiated at 360nm, and the whole cell was observed. After injection, the light intensity was rapidly reduced. After injection, the cell reactivity was confirmed. The vascular expansion was observed when the pigment was injected. The above mentioned irreversible damage to the cell membrane is necessary for accurate and skilled injection operation, and the rapid change of its concentration is necessary for improving the time resolution of the concentration measurement device. In the future, we will solve all kinds of problems