本研究已经成功分离和传代小鼠结肠间充质干细胞（MSCs）。结果显示小鼠MSCs在传代后第六天呈长梭形，细胞聚集呈“旋涡”状。成骨诱导显示细胞内可见有少量的橘红色胞外基质沉积，成脂诱导后可见胞内有着色的脂滴。流式检测显示CD29、CD44、CD105阳性， CD11b、CD31、CD34阴性。分离TNBS小鼠MLNs中的T淋巴细胞，将T细胞分别单独培养（alone）、与结肠MSCs经transwell小室共同培养以及直接接触（contact）培养， 3天后分别测定T淋巴细胞增生、凋亡、细胞周期，细胞因子和Treg细胞的表达。结果显示T淋巴细胞与MSCs经transwell小室非接触共同培养以及直接接触培养后，小鼠结肠MSCs可抑制T淋巴细胞的增殖，能将激活的T淋巴细胞细胞周期阻滞在G0-G1期，使细胞处于失能状态，同时Tregs 细胞的百分比明显增加，IFN-γ和TNF-α水平明显下降，IL-10水平明显上升，说明MSCs可以通过下调促炎症因子发挥免疫抑制作用。结果还显示：T淋巴细胞与MSCs经transwell小室非接触共同培养以及直接接触培养后，上清液中PGE2水平明显上升。加入吲哚美辛后，在transwell培养组和直接接触培养组中PGE2水平明显下降， T细胞增生分别由7.90%±1.70%上升至32.20%±3.68%（经transwell培养）和由6.55%±1.34%升至30.40%±1.41%（直接接触培养）（P<0.05）。本次实验还显示将MSCs注入小鼠体内后小鼠体重恢复较快，生存率高于TNBS组,第6天的组织学肉眼评分及病理评分都明显低于TNBS组小鼠。流式法检测CFSE标记的MSCs在各组织的表达情况：CFSE标记的MSCs在MSCs治疗组小鼠病变结肠的数量为17.62%，在小鼠正常结肠的数量为12.83%，而在TNBS小鼠结肠为7.76% ；CFSE标记的MSCs在MSCs治疗组腹腔淋巴结数量为9.32%，脾脏为8.54%；而在TNBS小鼠腹腔淋巴结为1.81%；脾脏为2.04%。