经CRISPR/Cas9敲入CCR7基因的iPS细胞分化的调节性DC的体内迁移及其诱导免疫耐受的研究

结题报告
项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    81671550
  • 项目类别:
    面上项目
  • 资助金额:
    60.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    H1102.免疫应答异常
  • 结题年份:
    2020
  • 批准年份:
    2016
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2017-01-01 至2020-12-31

项目摘要

Regulatory dendritic cell (DCreg) have an important role in maintaining immune tolerance, are believed to be used to treat autoimmune diseases and allografts rejection. However, in vitro generated DCregs, including the induced DCreg from iPS cells in our previous study rarely expressed CCR7 molecule, and their migration in vivo was inhibited. They were not easy to move into peripheral lymphoid tissues to regulate the immune reaction effectively. This shortage of in vitro generated DCregs limited their in vivo clinical application severely. Therefore, in this project, we are going to take the advantage of the editable property of iPS cells, use the latest development gene editing technology- CRISPR / Cas9 to knock-in the CCR7 gene into the mouse iPS cells to make the CCR7-specific iPS cells (CCR7-iPS). Then,we will explore the way to induce the CCR7-iPS cells into DCregs, to achieve the CCR7-iPS cells derived DCregs with CCR7 expressing stably, improve their migration to peripheral lymphoid tissues and make them play a role in the induction of immune tolerance. This project is starting from the practical problem using the derived source cells of DCreg to resolve the migrating difficulty. The results of this project will establish an important basis for clinical application of in vitro generated DCregs.
调节性树突状细胞(Regulatory Dendritic Cell, DCreg)因在维持免疫耐受方面的重要作用,被认为可以用来治疗自身免疫性疾病及移植免疫排斥。然而体外培养的DCreg,包括我们前一课题中成功诱导的iPS细胞由来的DCreg都极少表达CCR7分子,同时其在生体内的迁移受阻,很难迁至外周淋巴组织发挥作用,严重限制了体外培养DCreg的临床应用。因此,本项目设想结合iPS细胞可编辑的特性,利用目前最新发展的基因编辑技术CRISPR/Cas9将CCR7基因敲入小鼠iPS细胞,构建CCR7特异性iPS细胞(CCR7-iPS)。探索诱导CCR7-iPS细胞向DCreg分化,实现CCR7-iPS细胞由来的DCreg稳定表达CCR7,迁移能力提高,并发挥诱导免疫耐受的作用。本项目从实际问题出发,从诱导的源细胞入手解决DCreg的体内迁移问题,成果将为DCreg的临床应用建立重要基础。

结项摘要

本课题围绕多能干细胞的定向分化及应用开展了一系列研究。树突状细胞(DC)是专职抗原呈递细胞,外周免疫抑制作用的调节性树突状细胞(DCregs),可以通过诱导调节性 T细胞等机制调节机体免疫状态,获取足量DCregs进行过继治疗为自身免疫性疾病的治疗开辟新路。我们针对iPS向DCregs的定向分化进行了系列研究。我们探索了新的体外诱导DCregs的方法。我们尝试了利用血管内皮生长因子、五羟色胺、甘草酸、甘草次酸、茯苓酸、GYY4137、二甲双胍等药物和化学成分,发现了5-氨基乙酰丙氨酸、五羟色胺和二甲双胍可能是诱导DCregs生成的有效药物。我们在iPS细胞向树突状细胞诱导分化的方法上进行了对原方法的改良,在保证细胞质量的前提下缩短了分化培养的时间,从而减少了培养的时间成本和材料成本和细胞污染的危险几率。我们利用小鼠的心脏移植模型探索了iPS由来的DCreg在生体内的功能,证实 iPS-DCreg可以诱导同种异体的移植小鼠心脏获得免疫耐受。另一方面,白癜风是一种常见的以黑素细胞缺失为表现的皮肤病,自身免疫紊乱攻击黑素细胞被认为是发病机制之一。因此,我们开展了利用干细胞技术从补充黑素细胞和抑制免疫反应两方面出发来探索新的治疗方法。我们对白癜风患者的外周血单个核细胞进行了检测,发现白癜风患者外周血中的CD11c+树突状细胞活化程度高于正常人,对针对性治疗的探索提供了理论依据;我们开展了iPS/ES向表皮细胞的定向分化,建立了无血清分化黑素细胞、角质形成细胞、成纤维细胞的新方法;成功构建了由ES分化的角质形成细胞、成纤维细胞、黑素细胞合成的组织工程皮片;证实了ES/iPSC来源的黑素细胞免疫原性很低。我们构建了首个ES向黑素细胞分化的单细胞转录组图谱;我们通过实验验证了高剂量的EDN3与EDN1能够促进黑素细胞分化,EDNRA与EDNRB受体在黑素细胞分化过程中都有重要的作用。

项目成果

期刊论文数量(5)
专著数量(0)
科研奖励数量(0)
会议论文数量(0)
专利数量(0)
一种改良的小鼠诱导多功能干细胞(iPS)向 树突状细胞(DC)分化的方法
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2018
  • 期刊:
    复旦学报(医学版)
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    张琦;侯剑刚
  • 通讯作者:
    侯剑刚
体外培养调节性树突状细胞的研究进展
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    中华器官移植杂志
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    刘亚婷;张琦;徐金华
  • 通讯作者:
    徐金华
Increased Expression of Zyxin and Its Potential Function in Androgenetic Alopecia.
Zyxin 表达增加及其在雄激素性脱发中的潜在功能
  • DOI:
    10.3389/fcell.2020.582282
  • 发表时间:
    2020
  • 期刊:
    Frontiers in cell and developmental biology
  • 影响因子:
    5.5
  • 作者:
    Liu Q;Shi X;Zhang Y;Huang Y;Yang K;Tang Y;Ma Y;Zhang Y;Wang J;Zhang L;Zhang Q;Liu X;Lin J;Wang J;Wu W
  • 通讯作者:
    Wu W
iPSC-Derived Regulatory Dendritic Cells Inhibit Allograft Rejection by Generating Alloantigen-Specific Regulatory T Cells.
iPSC 衍生的调节性树突细胞通过生成同种异体抗原特异性调节性 T 细胞来抑制同种异体移植排斥
  • DOI:
    10.1016/j.stemcr.2017.03.020
  • 发表时间:
    2017-05-09
  • 期刊:
    Stem cell reports
  • 影响因子:
    5.9
  • 作者:
    Cai S;Hou J;Fujino M;Zhang Q;Ichimaru N;Takahara S;Araki R;Lu L;Chen JM;Zhuang J;Zhu P;Li XK
  • 通讯作者:
    Li XK
5-酮戊二酸(ALA)联合二甲铁离子体外诱导小鼠骨髓来源调节性树突状细胞的培养及鉴定
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2018
  • 期刊:
    中华器官移植杂志
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    张琦;蔡松洁;刘亚婷;侯剑刚
  • 通讯作者:
    侯剑刚

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    2019
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  • 作者:
    范明星;张琦;赵经纬;段芳芳;刘亚军;韩晓光;茅剑平;肖斌;刘波;田伟
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课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

AI项目摘要:

本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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