Protocadherin 7 and Osteoclast Maturation

已知炎症通过过度的破骨细胞（OC）活性在患有骨质疏松症的患者中引起骨破坏。 炎症性疾病，如牙周炎。 为了解决这种炎症的根本原因， 骨丢失，重要的是要了解如何骨稳态的细胞和分子机制 由骨形成成骨细胞（OB）和骨吸收OC维持的骨代谢受到炎症刺激的干扰。 靶向OC成熟而不是分化是特别令人感兴趣的，并且提供了额外的益处， 避免无意中抑制新骨形成。 然而，确定有希望的治疗靶点， OC的成熟需要对其调节机制有更深入的了解。 细胞粘附是一种 这是一个对OC成熟及其标志性特征多核化至关重要的生理过程。 过程中 通过筛选可能调控OC体外成熟的基因，我们鉴定了一个与细胞粘附相关的基因， pcdh 7是钙粘蛋白超家族中的一个原钙粘蛋白。 我们现在已经产生了Pcdh 7-β/β小鼠， 目的进一步研究Pcdh 7在OC成熟和炎症反应中的作用，并提出Pcdh 7在OC成熟和炎症反应中的作用机制。 具体目标：1。 研究Pcdh 7在OC分化、功能和炎性骨中的作用 损失我们将使用Pcdh 7-β/β-CD骨髓（BM）细胞来检查已知生物标志物的表达， 细胞生物学功能，包括粘附、运动、肌动蛋白环形成、皱褶边缘形成和囊泡 贩卖人口将产生Pcdh 7 floxed小鼠和BM嵌合体，用于更精确地询问 OC-β与OB-β特异性（或其他）Pcdh 7在骨稳态中的功能.这些老鼠也将 用于证实OC-10表达的Pcdh 7在炎性骨丢失中的重要性， LPS治疗或结扎引起的牙周炎后发生的免疫应答。 这些研究一起 应该阐明Pcdh 7在OC成熟和病理性骨丢失中的细胞特异性作用。 2. 探讨 OC生物学中Pcdh 7分子功能的机制。研究OC-10表达Pcdh 7蛋白的机制 调节细胞粘附和/或信号转导，我们将测试一个四步模型。 对于每一步，我们将测试 OC成熟，细胞粘附和信号通路的激活，并将利用生理学上的 活化的和hCD 3-β诱导型逆转录病毒（RV）Pcdh 7构建体。首先，我们将测试Pcdh 7是否介导细胞凋亡， 细胞相互作用，激活Pcdh 7细胞内信号传导，通过分别跟踪WT和Pcdh 7-β/β-cyclocs在混合 异型OC培养。 第二，我们将测试Pcdh 7的胞质结构域截短同种型的作用， 通过测定OC中的生理表达，然后通过测定OC中的RV-β表达同种型。 第三，我们将测试 Pcdh 7是否以及如果是，如何通过癌蛋白SET介导细胞内信号传导。第四，我们将采用 siRNA和化学抑制剂来测试Pcdh 7-β 2依赖性活化的各种细胞的相对贡献。 Pcdh 7-β 1介导的OC粘附和成熟的信号通路。总之，这些研究将改善我们的 了解Pcdh 7蛋白的功能，更具体地说，它如何控制OC成熟。

Inflammation  is  known  to  cause  bone  destruction  by  excessive  osteoclast  (OC)  activity  in  patients  with  inflammatory  diseases,  such  as  periodontitis.  To  address  the  underlying  causes  of  such  inflammation-­related  bone  loss,  it  is  important  to  understand  how  the  cellular  and  molecular  mechanisms  of  bone  homeostasis  maintained by bone-­forming osteoblasts (OBs) and bone-­resorbing OCs are perturbed by inflammatory stimuli.  Targeting  OC  maturation  rather  than  differentiation  is  of  particular  interest  and  provides  an  added  benefit  of  avoiding  unintentionally  inhibiting  new  bone  formation.  However,  identifying  promising  therapeutic  targets  of  OC  maturation  will  require  greater  understanding  of  its  mechanisms  of  regulation.  Cell  adhesion  is  a  physiologic  process  critical  to  both  OC  maturation  and  its  hallmark  feature,  multinucleation.  In  the  course  of  screening  potential  genes  that  regulate  OC  maturation  in  vitro,  we  identified  a  cell  adhesion-­related  gene,  Pcdh7,  a  protocadherin  member  of  the  cadherin  superfamily.  We  have  now  generated  Pcdh7-­/-­  mice  for  the  purpose  of  further  studying  Pcdh7  in  OC  maturation  and  inflammatory  responses,  and  therefore  propose  the  following  specific  aims:  1.  Investigate  the  role  of  Pcdh7  in  OC  differentiation,  function,  and  inflammatory  bone  loss. We will employ Pcdh7-­/-­ bone marrow (BM) cells to examine expression of known biological markers and  cell  biological  functions,  including  adhesion,  motility,  actin  ring  formation,  ruffled  border  formation,  and  vesicle  trafficking. Pcdh7floxed mice and BM chimeras will be generated for the purpose of more precisely interrogating  OC-­ versus OB-­specific (or other) Pcdh7 functions in the context of bone homeostasis. These mice will also be  employed  to  confirm  the  importance  of  OC-­expressed  Pcdh7  in  the  context  of  inflammatory  bone  loss  and  immune  responses  that  occur  after  LPS  treatment  or  ligature-­induced  periodontitis.  Together,  these  studies  should  elucidate  the  cell-­specific  roles  of  Pcdh7  in  OC  maturation  and  pathologic  bone  loss.  2.  Investigate  mechanisms of Pcdh7 molecular function within OC biology. To investigate how OC-­expressed Pcdh7 protein  regulates  cell  adhesion  and/or  signal  transduction,  we  will  test  a  four-­step  model.  For  each  step,  we  will  test  OC  maturation,  cell  adhesion,  and  activation  of  signaling  pathways,  and  will  employ  both  physiologically-­ activated and hCD3-­inducible retroviral (RV) Pcdh7 constructs. First, we will test whether Pcdh7 mediates cell-­ cell  interactions  that  activate  Pcdh7  intracellular  signaling  by  separately  track  WT  and  Pcdh7-­/-­  OCs  in  mixed  heterotypic  OC  cultures.  Second,  we  will  test  the  effects  of  cytoplasmic  domain  truncation  isoforms  of  Pcdh7  by  assaying  physiologic  expression  in  OCs  and  then  by  RV-­expressing  isoforms  in  OCs.  Third,  we  will  test  whether and, if so, how Pcdh7 mediates intracellular signaling via the oncoprotein SET. Fourth, we will employ  siRNA  and  chemical  inhibitors  to  test  the  relative  contributions  of  Pcdh7-­dependent  activation  of  various  signaling pathways to Pcdh7-­mediated OC adhesion and maturation. Together, these studies will improve our  understanding of the function of Pcdh7 protein generally, and more specifically, how it controls OC maturation.