FT-IR spektroskopische Untersuchungen zur Faltungs- und Kanalöffnungsdynamik des Porins OmpF von Escherichia coli

mittel的FT-IR差异光谱，skopischer方法，分析了结构相关蛋白（korrella） potenzialabhängigen Kanalöffnungsvorgangs，整合膜蛋白孔蛋白（OmpF von Escherichia coli）。在脂质谱研究中，研究人员重构了脂质谱分析和特征分析。红外光谱（FT-IR-ATR）和吸收/透射光谱(zellen) - n-dotiertem锗光学（mediotische）， die zugleich和Elektroden dienen。Mit diesen opti-elektrischen k<s:1> vetten können sowohl die rehydratisierten roteoliposomen inµm Schichten als auch d<e:1> nne (5-10nm), per Vesikel/Langmuir/Blodgett Technik auf ATR-Flächen hergestellte, Doppelschichtmembranen unterdem Einfluss hoher elektrischer Felder untersucht werden。[1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1]我是zweiten Fall gengen dazu Potenziale， die absolut genommen kleiner als 1伏特。Höchste Empfindlichkeit和Selektivität wind durch andwendung der modulationsspetroskie。

Mittels FT-IR differenzspektroskopischer Methoden soll das strukturelle Korrelat des potenzialabhängigen Kanalöffnungsvorgangs des integralen Membranproteins Porin (OmpF von Escherichia coli) untersucht werden. Hierfür werden orientierte, in Lipiddoppelschichten rekonstitutierte OmpF-Proben eingesetzt und charakterisiert. Als Messzellen werden spezielle FT-IR-ATR- und Absorptions/Transmissions-Zellen aus n-dotiertem Germanium als optischen Medien eingesetzt, die zugleich als Elektroden dienen. Mit diesen opti-elektrischen Küvetten können sowohl die rehydratisierten Rroteoliposomen in µm Schichten als auch dünne (5-10nm), per Vesikel/Langmuir/Blodgett Technik auf ATR-Flächen hergestellte, Doppelschichtmembranen unter dem Einfluss hoher elektrischer Felder untersucht werden. Im ersten Fall müssen relativ hohe Potenziale (+=50 bis 200V) über die Membranstapel angelegt werden, um Biomembran gerechte Feldstärken zu erreichen. Im zweiten Fall genügen dazu Potenziale, die absolut genommen kleiner als 1 Volt sind. Höchste Empfindlichkeit und Selektivität wird durch Anwendung der Modulationsspektroskopie erreicht.