Histamin-Neurotransmitter-Transportzyklus im Drosophila-Auge

果蝇-强化性神经递质组胺Aus中的Photorezeptorzellen Schütten。在突触后的情况下，这是一个历史性的过程，导致了超极化。在新的历史长河中，我们看到的是一种新的历史。我们在运输和运输过程中加入了组织蛋白β-Alanin zu N-β-丙氨酰-组织胺(Carcinin)。β-丙氨酸和组胺在光解蛋白中的转移。组氨酸脱羧酶(HDC)突变HdcJK910，组氨酸合成酶，组氨酸脱羧酶(HDC)组蛋白。Nach Gabe von组胺在Gehirnschnitten die Aufnahme in Gehirnschnitten Die Aufnahme in Gehirnschnitten Die Aufnahme and Substanzen MIT Spezifischen antiseren.在HdcJK910Mutante Mit Ebony和tan setzen wir Block kaden in den volgeschlagenen Transmitterkreislauf，DEM Zelltyp zugeordnet和DEM Zelltyp zugeordnet的基础上进行了免疫组织化学研究。Zusätzlich是一种变种，它是一种新的联结的循环方式。在活体内进行ERGS免疫组织化学染色，观察突触传递功能。麻省理工学院进行了一项实验，以验证组织的有效性。

Drosophila-Photorezeptorzellen schütten in tonischer Form den Neurotransmitter Histamin aus. Die Bindung an Histamin-gesteuerte Chloridkanäle der postsynaptischen, großen, monopolaren Zellen (LMC) führt zum Chlorideinstrom und einer daraus resultierenden Hyperpolarisation. Wegen der geringen Neusyntheserate von Histamin wird ein effektiver Wiederverwendungs-Kreislauf für Histamin gefordert. Wir haben dazu eine Modellvorstellung entwickelt, die Grundlage unserer Untersuchungen ist: Histamin wird aus dem synaptischen Spalt in die angrenzende Glia transportiert und dort durch das Ebony-Protein mit β-Alanin zu N-β-Alanyl-Histamin (Carcinin) umgewandelt. Nach Transport des Carcinins in die Photorezeptorzellen hydrolysiert das Tan-Protein das Konjugat wieder in die Ausgangsbestandteile β-Alanin und Histamin. Zur Untersuchung dieses Kreislaufs verwenden wir die Histidin Decarboxylase (Hdc) Mutante HdcJK910, die kein Histamin synthetisieren, zugeführtes Histamin aber in die Photorezeptorzellen aufnehmen kann. Nach Gabe von Histamin oder Carcinin verfolgen wir in Gehirnschnitten die Aufnahme der Substanzen mit spezifischen Antiseren. Durch Kombination der HdcJK910 Mutante mit ebony und tan setzen wir Blockaden in den vorgeschlagenen Transmitterkreislauf, die durch Akkumulation der Zwischenprodukte immunzytochemisch sichtbar gemacht und dem Zelltyp zugeordnet werden. Zusätzlich werden Mutationen eingesetzt, die das Recycling oder die Entleerung der synaptischen Vesikel blockieren. Die immunzytochemischen Nachweise werden durch Elektrotretinogramm-Aufzeichnungen (ERGs) als in vivo-Funktionsnachweis der synaptischen Transmission ergänzt. Mit diesen Experimenten wollen wir den vorgeschlagenen Weg des Histaminkreislaufs verifizieren.