Histamin-Neurotransmitter-Transportzyklus im Drosophila-Auge

果蝇- photorezeptorzellen sch<s:1>在tonischer形式den神经递质组胺。与组胺结合与组胺姿态研究Chloridkanäle der postsynaptischen， großen, monopolaren Zellen (LMC) fhrt zum chloridestrom and einer daraus resultierenden Hyperpolarisation。[3]组胺的合成与研究进展[j]。研究结果表明：组胺蛋白与神经胶质转运蛋白、黑檀木蛋白、β-丙氨酸、β-丙氨酸-组胺（癌）蛋白的关系。光敏蛋白、水解蛋白、β-丙氨酸和组胺中致癌物质的运输。研究了组氨酸脱羧酶（Hdc）突变体HdcJK910，组氨酸合成酶（Histamin synthesis），组氨酸合成酶（Histamin aberen），组氨酸合成酶（Histamin aberen）。组胺蛋白与致癌因子的关系研究。研究了HdcJK910突变基因与黑檀木基因的组合，并将其与黑檀木基因进行了比较，研究了黑檀木基因与黑檀木基因的结合，研究了黑檀木基因与黑檀木基因的结合。Zusätzlich werden基因突变研究，die as Recycling, die Entleerung der synaptischen Vesikel blockien。Die immunozytochemischen Nachweise werden durch elektretinogram - aufzeichnungen (ERGs) als in体内- funcktionsnachweis der synaptischen Transmission ergänzt。实验验证了该方法的有效性。

Drosophila-Photorezeptorzellen schütten in tonischer Form den Neurotransmitter Histamin aus. Die Bindung an Histamin-gesteuerte Chloridkanäle der postsynaptischen, großen, monopolaren Zellen (LMC) führt zum Chlorideinstrom und einer daraus resultierenden Hyperpolarisation. Wegen der geringen Neusyntheserate von Histamin wird ein effektiver Wiederverwendungs-Kreislauf für Histamin gefordert. Wir haben dazu eine Modellvorstellung entwickelt, die Grundlage unserer Untersuchungen ist: Histamin wird aus dem synaptischen Spalt in die angrenzende Glia transportiert und dort durch das Ebony-Protein mit β-Alanin zu N-β-Alanyl-Histamin (Carcinin) umgewandelt. Nach Transport des Carcinins in die Photorezeptorzellen hydrolysiert das Tan-Protein das Konjugat wieder in die Ausgangsbestandteile β-Alanin und Histamin. Zur Untersuchung dieses Kreislaufs verwenden wir die Histidin Decarboxylase (Hdc) Mutante HdcJK910, die kein Histamin synthetisieren, zugeführtes Histamin aber in die Photorezeptorzellen aufnehmen kann. Nach Gabe von Histamin oder Carcinin verfolgen wir in Gehirnschnitten die Aufnahme der Substanzen mit spezifischen Antiseren. Durch Kombination der HdcJK910 Mutante mit ebony und tan setzen wir Blockaden in den vorgeschlagenen Transmitterkreislauf, die durch Akkumulation der Zwischenprodukte immunzytochemisch sichtbar gemacht und dem Zelltyp zugeordnet werden. Zusätzlich werden Mutationen eingesetzt, die das Recycling oder die Entleerung der synaptischen Vesikel blockieren. Die immunzytochemischen Nachweise werden durch Elektrotretinogramm-Aufzeichnungen (ERGs) als in vivo-Funktionsnachweis der synaptischen Transmission ergänzt. Mit diesen Experimenten wollen wir den vorgeschlagenen Weg des Histaminkreislaufs verifizieren.