Strukturelle, molekulare und funkfionale Analyse der frühen Embryogenese beim Rind: Parameter für das Potenfial von Oozyten nach in vitro vs. in vivo Reifung

这是一个互动的过程，是潜在的，也是最重要的。Strukturelle，Molekulare and Funktionale Studien an体外培养技术的研究结果表明，该技术是一种新的技术手段。在活体中，FSH-Behandung der Spendertiere zeigte sich das Entwickrungpotential der Oozyten in Allen Altersgruppen signifikant erhöht，am stärksten be den Färsen.这场战争的意义是体内蛋白质组分和体外培养的蛋白质组分都是定量的。在体外和活体实验中，我们发现了更广泛的研究和更广泛的应用前景。在Antrag zielt darauf ab，die kritischen Phasen der frühenen Embrygenese Exakt zu analysieren，um die für Zellzyklus-Arcement and Zelltod Verantwortlichen Machine zu Klären.Mikroskopische ansätze，Inlusion Leend胚胎-Beobachtung，异常雄性Mitosen，Chromosomen-Fehlverteilungen，Arch and Zelltod in der Mitose，异常雄性Zytokinese and Permanenten G2/M Arressieren。我们对蛋白质组分进行了定量测定，并对其进行了分析。DEREN DYNAMIK WIRD DAHER VON DER REIFEN MM Oozyte bis zu Blastomeren der Zweiten一代MIT hochsenfiven and Präzisen Massentrotromrischen Verfahren erFasst.

Das weibliche Rind ist ein interessantes Modell für Studien der Ovarfunkfion, des Oozytenpotenfials, der frühen Embryogenese sowie des reprodukfiven Alterns der Frau. Strukturelle, molekulare und funktionale Studien an in vitro gereiften Oozyten aus Spendertleren unterschiedlicher reproduktiver Lebensphasen enthüllten signifikante altersabhängige Unterschiede, wobei Oozyten von jungen Kühen das beste und die von Färsen das schlechteste Entwicklungspotential aufwiesen. Nach in vivo Reifung durch FSH-Behandlung der Spendertiere zeigte sich das Entwicklungspotential der Oozyten in allen Altersgruppen signifikant erhöht, am stärksten bei den Färsen. Dies war mit signifikanten Veränderungen des quantitativen Proteomprofils von in vivo gegenüber in vitro gereiften Oozyten assoziiert. Zudem zeigte unsere Studie, dass die ersten vier Teilungszellen eine hohe Fehlerrate aufweisen, die das unterschiedliche Entwicklungspotential von in vitro und in vivo gereiften Oozyten widerspiegelt. Der Antrag zielt darauf ab, die kritischen Phasen der frühen Embryogenese exakt zu analysieren, um die für Zellzyklus- Arrest und Zelltod verantwortlichen Mechanismen zu klären. Mikroskopische Ansätze, inklusive Lebend- Embryo-Beobachtung, werden abnormale Mitosen, Chromosomen-Fehlverteilungen, Arrest und Zelltod in der Mitose, abnormale Zytokinese und permanenten G2/M Arrest adressieren. Wir verfolgen die Hypothese, dass abnormale Passagen durch die ersten Zellzyklen durch quantitative Veränderungen des Proteoms reflektiert werden. Deren Dynamik wird daher von der reifen MM Oozyte bis zu Blastomeren der zweiten Generation mit hochsensifiven und präzisen massenspektrometrischen Verfahren erfasst.