低分子量Gタンパク質Rac3のノックアウトマウスの作製と解析

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平成17年度は平成16年度に引き続きRac3ノックアウトマウス作製するため、Rac3遺伝子座にloxP及びloxP-dsRedの挿入されたコンディショナルアリルを持つF1マウスと生殖腺にCre酵素を発現するトランスジェニックマウスEIIa-CreTgマウスと交配させることにより、Rac3遺伝子のマウスゲノム上よりの除去を試みた。しかしながら、Rac3遺伝子座にloxP及びloxP-dsRedの挿入されたコンディショナルアリルを持ち、更にEIIa-CreTgを持つマウスは生まれてきているのだが、Cre酵素によりRac3のcoding regionが全て欠失したヌルアリルを持つヘテロマウスを得ることは出来なかった。そこで新たにRac3遺伝子座の全コーディングエクソンをネオマイシン耐性遺伝子によって破壊するターゲッティングベクターを構築し直し、ES細胞への導入を行ない、相同組み換え体を単離した。また小脳顆粒細胞特異的にCre酵素を発現するトランスジェニックマウスを作製するために、小脳顆粒細胞特異的に発現するNMDA型グルタミン酸受容体のε3サブユニット(NR2C)遺伝子の5'上流領域10kbの下流にCre遺伝子を挿入したベクターを構築し、マウスの受精卵に注入し、NR2C-CreTgマウスを作製した。得られた2系統のTgマウスをCre酵素が働くとβ-galactosidaseが発現するCAG-CAT-LacZ reporter Tgマウスと交配させ、Cre酵素の発現を確認した。得られた2系統の内、1系統は全くβ-galactosidaseの発現が確認出来ず、別の1系統はほぼ脳全体にβ-galactosidaseが発現していた.そこで、新たにTgマウスを作製し直すために、NR2C-CreTgの上流及び下流に周りのプロモーターやエンハンサーの影響を排除するinsulator配列を挿入したベクターを構築した。